Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции. Внутрибольничные инфекции

Человек ежедневно сталкивается с огромным количеством разных вирусов и бактерий. В большей части случаев такие встречи происходят бесследно, никак не отражаясь на самочувствии и состоянии здоровья. Но при сниженном иммунитете или при наличии сопутствующих обстоятельств агрессивные частицы могут привести к развитию самых разных заболеваний. И если человек находится в больнице, особенно, в стационарном отделении, вероятность возникновения болезней несколько возрастает. И самая серьезная из них – это внутрибольничная хирургическая инфекция, обсудим особенности такого нарушения здоровья чуть более подробно, и узнаем, возможна ли профилактика хирургической внутрибольничной инфекции.

Что такое внутрибольничная хирургическая инфекция?

Чем опасны внутрибольничные хирургические инфекции?

Предупредить поражение внутрибольничными хирургическими инфекциями очень сложно. Источником заражения обычно выступают сами пациенты либо медицинский персонал, которые являются бактерионосителями либо больными со стертой и манифестной формой патологии. При этом передача заболевания может осуществляться самыми разными механизмами: воздушно-капельным, фекально-оральным, контактным и трансмиссивным. Известны случаи, когда внутрибольничные хирургические инфекции передавались парентерально – во время выполнения самых разных инвазивных медицинских манипуляций.

Основная опасность внутригоспитальных хирургических инфекций состоит в их высокой изменчивости, лекарственной резистентности, а также в устойчивости к влиянию факторов среды, представленных ультрафиолетом, дезинфектантами и пр.

Кто может пострадать от внутрибольничных хирургических инфекций?

Такие заболевания опасны для всех пациентов стационарного отделения. Но в группе повышенного риска находятся дети, пожилые и ослабленные больные, а также те, у кого диагностированы хронические болезни, иммунодефицит и онкопатологии.

Само собой, восприимчивость к таким недугам на порядок возрастает у пациентов с открытыми ранами, полостными дренажами, мочевыми и внутрисосудистыми катетерами, трахеостомами и прочими инвазивными устройствами.

Если больному проводят продолжительную антибиотикотерапию, или он принимает лекарства для подавления иммунитета (иммуносупрессоры) либо особенно долго находится в стационаре, вероятность поражения увеличивается еще больше.

Как лечат внутрибольничные хирургические инфекции?

Пациенты, у которых подозревают развитие инфекционного процесса, нуждаются в изоляции. После медперсонал осуществляет тщательную текущую и заключительную дезинфекцию в отделении.

Для подбора максимально эффективного противомикробного препарата проводят антибиотикограмму.

Так внутрибольничные инфекции, спровоцированные грамположительной флорой, поддаются коррекции с использованием Ванкомицина.

Если причиной недуга стали грамотрицательные микроорганизмы, предпочтение отдают карбапенемам, цефалоспоринам ІV поколения, а также амингликозидам.

Довольно часто доктора принимают решение о параллельном использовании специфических бактериофагов и иммуностимуляторов. Может применяться интерферон, витаминные препараты, также часто осуществляют переливание лейкоцитарной массы.

Если есть необходимость, специалисты осуществляют чрезкожное облучение крови (ВЛОК либо УФОК), иногда практикуется проведение экстракорпоральной гемокоррекции (путем гемосорбции либо лимфосорбции). Успешная симптоматическая терапия подразумевает подбор лечения с учетом клинической картины возникшей внутрибольничной инфекции с привлечением ряда узких специалистов.

Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции

Профилактика таких заболеваний должна быть многоуровневой: начиная от планировки хирургических отделений и оканчивая самыми элементарными мерами гигиены. В целом, все основные меры по предупреждению внутрибольничных инфекций можно свести к соблюдению ряда санитарно-гигиенических и противоэпидемических требований.

Особенное внимание должно уделяться режиму дезинфекции помещений и предметов ухода, использованию современных антисептических средств высокой эффективности, выполнению качественной предстерилизационной обработки, а также стерилизации инструментария. Все без исключения сотрудники медучреждения должны безукоснительно следовать правилам и нормам асептики и антисептики, которые прописаны в соответствующих документах.

Дополнительная информация

Пациентам, перенесшим внутрибольничную инфекцию, приходится долго восстанавливаться и налаживать работу иммунной системы. И с этой целью могут применяться различные травы и подручные средства. Так отличный иммуностимулирующий эффект дает известная трава эхинацея, полезные свойства которой как раз кстати в данном случае. Для приготовления лекарственного средства нужно подготовить сто грамм измельченного растительного сырья. Заварите его тремястами миллилитрами только вскипевшей воды и подогрейте на водяной бане в течение двадцати минут. Остудите приготовленный отвар и процедите. Принимайте его по четверти стакана трижды на день.

Целесообразность применения средств народной медицины не лишним будет обсудить с врачом.

Тема: Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции. Асептика и антисептика.

Цель лекции: формирование общих и профессиональных компетенций по организации профилактики хирургической внутрибольничной инфекции, методам асептики и антисептики используемых в хирургии.

План лекции :

1. Гигиеническое мытье. Руки моются под струей теплой проточной воды с использованием одноразового или жидкого мыла в течение 1-2 мин. При этом соблюдается правило последовательности обработки: обработанными участками рук не касаться менее чистой кожи. После чего руки высушиваются стерильной салфеткой или полотенцем.

Примечание. Запрещается использовать щетки для обработки кожи кистей рук и предплечий.

2. Обработка химическими антисептиками. Современные методы хирургической антисептики рук.

Обработка первомуром . Используется 2,4% раствор первомура (рецептура С-4), представляющего смесь перекиси водорода, муравьиной кислоты и воды.

10 л рабочего раствора разливают в эмалированные тазы. В каждом тазу независимо от объема могут обрабатывать руки 10 человек. Рабочий раствор используют в течение суток.

Хирургическая инфекция – внедрение и размножение в организме человека болезнетворных микробов, вызывающих гнойно-воспалительные процессы, требующие хирургического лечения.

Хирургическая инфекция возникает вследствие проникновения в рану гноеродных микробов – аэробов и анаэробов. Аэробы живут и размножаются при доступе кислорода, анаэробы – в бескислородных условиях.

Основные источники инфекции- места обитания, развития и размножения микробов – больной человек, бациллоноситель, животные. Именно от них патогенные микроорганизмы с гноем, слюной, слизью и другими выделениями попадают во внешнюю среду (воздух, окружающие предметы, руки персонала и др.). Затем эта экзогенная (из внешней среды) инфекция может проникнуть в рану пациента разными путями: воздушным, капельным, контактным, имплантационным.

Источником эндогенной инфекции являются гнойно-воспалительные процессы в организме самого человека вне зоны операции (кариозные зубы, тонзиллит, гайморит), а также микробы сапрофиты полости рта, кишечника, дыхательных и мочевыводящих путей.

Причиной гнойно-воспалительных заболеваний чаще бывают стафилококки, стрептококки, бактерии группы протея, синегнойная и кишечная палочки. Наиболее частым возбудителем гнойных заболеваний является стафилококк.

Общими признаками различных возбудителей являются:

• 
  Высокая адаптационная способность микроорганизмов к среде обитания благодаря своей быстрой изменчивости;
• 
  Способность вырабатывать экзотоксины различной активности, облегчающие проникновение микробов в макроорганизм и определяющие инвазивность;
• 
  Патогенность – способность вызывать развитие нагноительных процессов в организме.

Зная возбудителей хирургической инфекции, пути их проникновения в организм человека, медицинская сестра должна уметь заподозрить признаки воспаления по местным и общим симптомам.

К местным симптомам относятся:

• 
  боль;
• 
  покраснение;
• 
  отёк;
• 
  местное повышение температуры;
• 
  нарушение функций.

• 
  головная боль;
• 
  недомогание;
• 
  озноб;
• 
  повышение температуры тела;
• 
  тошнота, рвота;
• 
  изменение в анализе крови (ускоренная СОЭ, лейкоцитоз).

• 
  соблюдение санитарно-гигиенического режима;
• 
  соблюдение правил сбора, хранения и удаления отходов в ЛПУ;
• 
  уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на объектах, окружающих пациента, и предметах медицинского назначения путём их дезинфекции;
• 
  устранение возбудителей инфекции путём обследования пациентов и медицинского персонала, рационального назначения антибиотиков, смены антисептических средств;
• 
  прерывание путей передачи при строгом соблюдении асептики;
• 
  осуществление эффективного контроля стерилизации и дезинфекции;
• 
  повышение устойчивости организма человека.

Основные структурные подразделения хирургического стационара:

приемное отделение - осуществляет прием, регистра­цию, обследование и санитарную обработку больных, их транспортировку в лечебно-диагностические отделения хирургического профиля (хирургические отделения);

хирургическое отделение - предназначено для обследо­вания и лечения хирургических больных с учетом про­филя заболевания. На отделении строго соблюдается принцип асептики - разделение больных на «чистых» и «гнойных» (выделяются отдельные палаты для «гной­ных» больных); обязательно наличие двух перевязочных («чистой» и «гнойной»); послеоперационные палаты рас­полагаются в противоположной от гнойных палат и пе­ревязочной части отделения;

Операционный блок - предназначен для выполнения хирургических вмешательств, располагается изолиро­ванно от отделения, лучше в специальных пристройках. Это самое чистое место хирургического стационара, где строго соблюдаются правила асептики и принципы зо­нальности:

первая зона - абсолютной стерильности - вклю­чает: операционную - для проведения операций; пред­операционную - для надевания бахил, масок, хи­рургической антисептики рук перед операцией; стерилизационную - для стерилизации дополнительных инструментов, необходимых по ходу операции;

вторая зона - строгого режима (относительной стерильности) - включает: санпропускники; раздевал­ки для персонала; душевые установки; комнаты для надевания спецодежды (халаты или костюмы из лег­кой ткани, сменная обувь, колпак); помещения для хранения наркозной аппаратуры, обработки инструмен­тов после операции;

третья зона - ограниченного режима (техниче­ская) - включает помещения для хранения: крови и ее препаратов, переносной аппаратуры, инструментария, медикаментов, чистого операционного белья; комнаты для хирургов, анестезиологов, медицинских сестер (опе­рационных, анестезисток);

четвертая зона - общего режима - включает кабинеты заведующего, старшей медицинской сестры, помещения для грязного белья, отходов.

централизованное стерилизационное отделение (ЦСО)
обеспечивает стерилизацию операционного белья, пе­ревязочного материала, перчаток, хирургического ин­струмента;

отделение переливания крови (ОПК) или трансфузионный кабинет обеспечивает заготовку и хранение крови, ее препаратов; производит индивидуальный подбор кро­ви, ее препаратов для трансфузий.

Во всех подразделениях хирургического стационара полы и стены должны иметь покрытия, выдерживающие много­кратную влажную уборку с применением антисептиков (линолеум, кафельная и керамическая плитка, масляная краска). В операционной и перевязочной аналогичные тре­бования предъявляются к потолкам.

Оборудование хирургического стационара изготовляет­ся из металла, пластмассы, имеет простые конфигурации, легко передвигается (имеет колесики) и дезинфицируется.

Лекция №3

Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции

Асептика - комплекс мероприятий, направленный на предупреждение проникновения микробов в рану, организм в целом.

Одни организационные мероприятия не могут предупредить инфицирование раны воздушным и капельным путями. Несмотря на соблюдение правил асептики, каждый член хирургической бригады при работе выделяет в окружаю­щую среду до 1500 микроорганизмов в одну минуту. Допу­стимое количество микробов в операционной до начала ра­боты не должно превышать 500 в 1 м 3 воздуха, а во время проведения операции - 1000 при условии патогенных мик­роорганизмов.

Специальные методы уничтожения микробов в воздухе и предотвращения их попадания в окружающую среду:

• 
  проветривание и вентиляция помещений проводится по графику и снижает загрязненность воздуха микроорга­низмами до 30 %;
• 
  в особо чистых помещениях (операционная, перевязочная) дополнительно используются бактерицидные ультрафиолетовые лампы.

Личная гигиена больных и медицинского персонала . Выполнение этого требования для больных включает:

• 
  санобработку, смену одежды, контроль на педикулез в приемном покое при поступлении;
• 
  соблюдение правил личной гигиены на отделении (для тяжелых больных с помощью медицинского персона­ла, родственников);
• 
  регулярную смену постельного и нательного белья 1 раз в 7 дней или по мере загрязнения.

• 
  соблюдать правила личной гигиены;
• 
  ежедневно менять спецодежду;
• 
  своевременно проводить санацию полости рта и носо­глотки;
• 
  проходить полный медицинский осмотр по графику;
• 
  своевременно один раз в квартал проходить обследование на носительство патогенного стафилококка в носо­глотке;
• 
  отстраняться от работы при наличии гнойничковых и простудных заболеваний.

В операционной, перевязочной, процедурном кабинете предусмотрены следующие виды уборки :

предварительная - в начале рабочего дня (заполняются емкости дезинфицирующими растворами, стирается пыль с горизонтальных поверхностей, накрываются стериль­ные столы с инструментом и др.);

текущая - в течение операции или рабочего дня по мере необходимости (удаляются из тазов для ис­пользованного материала перевязочный материал, опе­рационное белье, инструменты; устраняются загрязне­ния: вытираются полы, столы и др.);

послеоперационная - в промежутке между операциями или перевязками (освобождаются бросалки, убираются использованные инструменты, перевязочный материал; обрабатывается перевязочный стол, полы; готовится сте­рильный стол и инструменты для следующей операции);

заключительная - в конце рабочего дня (помещение и оборудование моются и протираются дезинфектантами, выносится весь отработанный материал, стены моются на уровень вытянутой руки, проводится УФО помещения);

генеральная - 1 раз в 7 дней по графику (моются сте­ны, потолки, лампы, окна антисептическими средства­ми; передвижное оборудование вывозится и обрабаты­вается в другом помещении; проводится УФО помещения). Если в ночное время в помещении не проводится работа, предварительная и заключительная уборка совмещаются.

В качестве дезинфектантов для генеральной уборки используются комплексы: 6 % раствор перекиси водорода с добавленн­ом 0,5 % моющего средства; 0,03 % нейтральный анолит с до­бавлением 0,5 % моющего средства; 1 % раствор хлорамина, активированного нашатырным спиртом (10 % раствор аммиака -40 мл на 10 литров хлорамина).

Для предупреждения попадания микробов в воздух, а затем в рану с капельками жидкости (слюна, слизь) допол­нительно к вышеизложенному используются следующие методы борьбы с капельной инфекцией .

Ношение масок . Маска предупреждает выделение сек­рета из носоглотки и полости рта во внешнюю среду. Как правило, применяются фильтрующие маски, закрывающие нос, рот и подбородок. Изготовляют маску размером 16 х 20 см из 4-6 слоев марли с тесемками по углам дли­ной 30-40 см. Маски маркируются по цвету и меняются каждые 3 часа. После употребления их кипятят в дистил­лированной воде - 30 мин, в 2 % растворе соды - 15 мин, стирают, высушивают, проглаживают. В операционной ис­пользуются только стерильные маски! Разовые маски из целлюлозы сохраняют свою эффективность в течение 1 часа. Ношение масок обязательно в операционной, перевязоч­ной, процедурном кабинете, послеоперационной палате, особенно при выполнении манипуляций в ране и связан­ных с нарушением целостности кожных покровов и слизи­стых оболочек.

Ограничение разговоров и излишних передвижений в операционной, перевязочной. В операционной, перевя­зочной должно находиться как можно меньше людей. Пос­ле окончания работы операционной бригады количество микробов в 1 м 3 воздуха возрастает приблизительно в 5-6 раз, а если присутствует, например, группа студентов из 5-6 человек - то в 20-30 раз. Передвижения в операцион­ной и перевязочной без необходимости нежелательны.

Профилактика контактной инфекции

Для борьбы с микробами на путях экзогенного инфици­рования раны необходимо помнить и соблюдать основной принцип асептики : все, что соприкасается с поверхностью раны, должно быть стерильным.

Стерилизация - метод, обеспечивающий гибель веге­тативных, споровых форм патогенных и непатогенных мик­роорганизмов в стерилизуемом материале.

Ответственной за асептику является медицинская сест­ра, она обязана:

1. 
   знать требования, предъявляемые к СЭР и регламенти­руемые приказами, отраслевым стандартом, методиче­скими рекомендациями санитарно-эпидемиологической службы;
2. 
   уметь осуществлять четыре этапа стерилизации:
   • 
     предстерилизационную подготовку материала (вклю­чая дезинфекцию);
   • 
     укладку и подготовку к стерилизации;
   • 
     собственно стерилизацию;
   • 
     хранение стерильного материала.

• 
  высокая температура - теку­чий пар, пар под давлением, сухой жар;
• 
  лучевая стерилизация - ионизирующее излучение (у-лучи), ультрафиолетовые лучи, ультразвук. Из-за большой опасности проникающей радиации стерилизация Y-лучами проводится в заводских условиях для антимик­робной обработки одноразовых инструментов, перчаток, шовного материала.

• 
  пары формалина, окись этилена используются для стери­лизации оптических, дорогостоящих инструментов в стерилизационных герметических камерах. В зависимости от состава газовой смеси и температуры в камере стери­лизация длится - 6-48 часов;
• 
  химические антисептики: 6 % раствор перекиси во­дорода, 1 % раствор дезоксона-1, 2,4 % раствор первомура (рецептура С-4) - используются для холодной сте­рилизации изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозионно-стойкого металла. Изделия в разобранном виде полностью погружаются в раствор на время стерилизации, затем отмываются в стерильной воде.

I. Предстерилизационная подготовка .

Перевязочный материал . Готовится из марли - это раз­ных размеров шарики, салфетки и тампоны (50 х 70, 40 х 60, 15 х 20см), турунды. Вату используют для изготовления помазков (ватных тупферов), ватно-марлевых повязок, шариков. Помазок - деревянная палочка длиной 10-15 см, на один конец которой плотно наматывается вата.

Ватно-марлевая повязка - тонкий слой ваты между 2-3 слоями марли.

Ватный шарик - плотно спрессованный кусочек ваты размером 10 х 10 см.

При изготовлении перевязочного материала использу­ются специальные приемы, предотвращающие осыпание нити марли.

Для удобства подсчета шарики укладываются в марле­вые салфетки по 10, 50, 100 штук. Малые, средние салфет­ки и тампоны связываются по 10 штук, а большие - по 5 штук; помазки - по 10 штук, турунды сматываются в клубки.

Перевязочный материал повторно не используется.

Операционное белье . Это хирургические халаты, про­стыни, полотенца, подкладные, изготовленные из хлопча­тобумажной ткани. Операционное белье используется мно­гократно, поэтому после операций, перевязок его предстерилизационная подготовка проводится централизо­ванно в специализированном отделении. Белье погружают на два часа в один из дезинфицирующих растворов: 3 % хлорамин, 0,03 % анолит. Затем его прополаскивают, сти­рают, высушивают.

Перчатки. Изготовляются из резины и используются медицинским персоналом при работе в операционной, пе­ревязочной, процедурном кабинете палатной медицинской сестрой. Чаще используются одноразовые перчатки, про­шедшие лучевую стерилизацию в заводских условиях. При многократном использовании (работа с кровью, выделени­ями) они замачиваются в 3 % растворе хлорамина на 60 мин или 0,03 % растворе нейтрального анолита. После дезин­фекции перчатки промывают под проточной водой, погру­жают в моющий комплекс, после чего опять промывают проточной водой, ополаскивают дистиллированной водой, просушивают, проверяют на герметичность, пересыпают тальком каждую пару.

II. Укладка и подготовка операционного белья и перчаток к стерилизации.

Халаты, полотенца, подкладные складывают соответ­ствующим образом. Каждую пару перчаток заворачивают в двухслойную бязь.

Весь подготовленный материал укладывается в биксы тремя способами.

1) Универсальная (комплексная) укладка - в один бикс секторально и послойно размещаются: перевязочный материал, простыни, полотенца, халаты, маски. Эта укладка может использоваться в перевязочной и малой операционной. Основной ее недостаток: требуемое ко­личество материала невозможно разместить даже в са­мом большом биксе в соответствии с требованием к сте­рилизации материала - он должен располагаться рыхло. Кроме того, современные операции велики по объему вмешательства, поэтому использование комплексной укладки нерационально.

2)Целенаправленная укладка - в один бикс укладывается весь материал, необходимый для определенной операции. В настоящее время такие укладки используются только для проведения небольших операций, процедур: трахеостомии, катетеризации подключичной вены, пункции (плевральной, абдоминальной, спинномозговой). В одну укладку помещаются необходимые инструменты и пере­вязочный материал.

3) Видовая укладка - в один бикс помещается один вид материала: белье, или перевязочный материал, или пер­чатки. В настоящее время это самый распространенный, удобный, рациональный вид укладки.

Заполняя бикс материалом, необходимо:

Обработка рук медицинского персонала . Обработка рук - важное мероприятие профилактики контактной инфекции. Врачи-хирурги, операционные, перевязочные, процедурные медицинские сестры должны постоянно ухаживать за кожей рук. Основное требование к правильному содержанию рук: кожа рук должна быть мягкой, эластичной, без ссадин и царапин; ногти подстрижены, без лака.

Перед началом работы снимаются кольца, браслеты, часы.

Медицинский персонал должен мыть руки, чтобы удалить грязь и уменьшить количество бактерий на коже рук.
Существует три уровня обработки рук:

Гигиеническое (обычное) мытье - проводится перед началомработы, в течение и в конце рабочего дня. Необходимо строго соблюдать технику мытья рук. Для гигиенического мытья предпочтительнее использовать жидкое мыло в дозаторах и одноразовые полотенца.
Гигиеническая антисептика рук - предназначена для прерывания передачи инфекции через руки медицинского персонала. Обязательно проводится при контакте с выделениями больных (кровь, гной и др.) и использованным перевязочным материалом, бельем, инструментом.

Техника гигиенической антисептики рук .

1. 
   Этап предварительного мытья рук водой с мылом отсут­ствует (для снижения риска механического распростра­нения микробов).
2. 
   Тщательное энергичное втирание антисептика в кожу рук в течение 30с- 2 мин.
3. 
   Высушивание рук на воздухе в течение 1-2 мин, согласно инструкции по применению различных антисептиков.

Классические методы обработки рук Альфельда, Фюрбрингера, Спасокукоцкого-Кочергина в настоящее время не применяются.

В соответствии с современными требованиями хирурги­ческая антисептика рук проводится в два этапа.

1. Гигиеническое мытье. Руки моются под струей теплой проточной воды с использованием одноразового или жидкого мыла в течение 1-2 мин. При этом соблюдается правило последовательности обработки: обработанны­ми участками рук не касаться менее чистой кожи. Пос­ле чего руки высушиваются стерильной салфеткой или полотенцем.

Примечание. Запрещается использовать щетки для об­работки кожи кистей рук и предплечий.

2. Обработка химическими антисептиками. Современные методы хирургической антисептики рук.

Обработка первомуром . Используется 2,4% ра­створ первомура (рецептура С-4), представляющего смесь перекиси водорода, муравьиной кислоты и воды.

10 л рабочего раствора разливают в эмалированные тазы. В каждом тазу независимо от объема могут обрабатывать руки 10 человек. Рабочий раствор ис­пользуют в течение суток.

Методика обработки: мытье рук в течение 1 мин в тазу с первомуром, затем высушивание стерильной салфеткой.

Обработка хлоргексидином (гибитаном). Используется 0,5 % спиртовой раствор. Способ его приго­товления: к 500 мл 70 % этилового спирта добавить 12,5 мл 20 % раствора гибитана.

Методика обработки: руки дважды обрабатываются сте­рильным тампоном, смоченным антисептиком, в течение 2-3 мин.

Обработка АХД-2000, АХД-2000-специаль , «Плевосепт».

Методы обработки: на кожу рук наносится 5 мл сред­ства, лучше с помощью дозатора, и тщательно втирается в течение 2-3 мин до высыхания. Через 2,5 мин процедуру повторяют.

Обработка церигелем . Препарат используется для ускоренной хирургической антисептики рук. Он обладает пленкообразующим эффектом.

Методика обработки: на кожу рук (в экстренных случа­ях без гигиенического мытья) наносятся 3-4 мл церигеля, и раствор тщательно втирается в течение 8-10 с; руки вы­сушиваются с образованием пленки.

После хирургической антисептики рук любым методом, кроме церигеля, сразу надевают стерильные перчатки и об­рабатывают их шариком со спиртом для удаления талька.

Помните: запрещается обрабатывать перчатки антисепти­ком в ходе операции; смена перчаток обязательна после завер­шения «грязного» этапа операции; при длительности операции свыше 3 ч необходимо повторить хирургическую антисептику рук и вновь надеть перчатки.

Общие правила хирургической антисептики рук совре­менными антисептиками:

1. 
   Антисептик наносят только на сухие руки после гигие­нического мытья.
2. 
   Препарат энергично втирают в кожу кистей рук и пред­плечий дву- или трехкратно в течение определенного вре­мени, согласно инструкции.
3. 
   На высохшие руки сразу надевают стерильные перчатки.

Этапность дезинфекции зоны операции на операционном столе предложена Филончиковым (1904) и Гроссихом (1908).

Этапы обработки операционного поля на операционном столе:

• 
  широкая двукратная обработка «от центра к периферии»,загрязненные участки (пупок, паховые складки, подмы­шечные впадины и др.) обрабатывают в последнюю оче­редь;
• 
  изоляция зоны операции стерильным бельем, повторная обработка;
• 
  обработка перед наложением швов на кожу;
• 
  обработка после наложения швов на кожу.

По ОСТу для обработки операционного поля применяются современные антисептики: 1% раствор йодоната, хлоргексидин, АХД.

УСВОЕНИЯ УЧЕБНОЙ ДИСЦИПЛИНЫ

Выберите правильный ответ.

1. Асептика – это:

б) уничтожение всего живого

2. Антисептика – это:

а) уничтожение болезнетворных микробов

б) уничтожение всего живого

а) аскорбиновая кислота

б) бензойная кислота

в) янтарная кислота

г) винно-каменная кислота

а) мочевина

б) тиомочевина

в) бензойная кислота

г) винно-каменная кислота

а) обжигание

б) пар под давлением

в) текучий пар

г) сухой жар

а) физический

б) химический

в) биологический

г) бактериологический

а) автоклавирование

б) ионизирующее излучение

в) первомур

г) кипячение

а) химической

б) биологической

в) механической

г) физической

а) химический

б) физической

в) механической

г) биологической

а) механической

б) физической

в) химический

г) биологической

б) медицинский персонал с ОРВ

в) пациент с ОРВИ

г) нестерильные инструменты

а) текучий пар

б) пар под давлением

в) хлоргексидин

г)первомур

д) раствор Люголя

а) сайдекс

б) кипячение

в) автоклавирование

г) сухой жар

а) хлорамин Б – 0,25 %

б) первомур – 2,4 %

в) гибитан – 0,5 %

г) АХД –2000;

д) нашатырный спирт 0,5 %

а) УФО помещений

б) УФО крови

в) пар под давлением

г) ионизирующее излучение

д) сухой жар

а) ультразвук

б) некрэктомия

в) дренирование

д) гигроскопичность марли.

а) УФО помещений

в) стерилизацию эндопротезов

а) хорошее освещение

б) холодные инструменты

в) свежий реактив

г) экспозиция 1 мин

д) экспозиция 2 мин

Дополните.

а) промаркировать КСК5

32. Дезинфекция инструментов:

в) обеззаразить накопитель

г) замочить в накопителе

а) высушить инструменты

в) промыть в моющем растворе;

д) отмыть под проточной водой

е) погрузить в моющий раствор

Ответы к тестам

Обезболивание

а) адреналин

б) эфедрин

в) амилнитрит

г) кофеин

а) на II стадии наркоза

а) историю болезни

б) лист наблюдения

в) анестезиологическую карту

г) температурный лист

а) нервных окончаниях

б) ретикулярной формации

а) кинины

б) адреналин

в) серотомин

г) гистамин

д) норадреналин

6.Виды местной анестезии

а) срочная

б) плановая

в) поверхностная

г) инфильтрационная

д) внутривенная

1в, 2б, 3в, 4бв, 5авд, 6вгд

Гемостаз

1. Причина острой кровопотери

А) наложение жгута

б) лигирование сосуда в ране

в) электрокоагуляция

г) пальцевое прижатие

в) пузырь со льдом

8. Физические методы остановки кровотечения - это

а) пальцевое прижатие сосуда

б) лазерный луч

в) максимальное сгибание

г) пузырь со льдом

д) гемостатическая губка

9. Препараты, повышающие свертываемость крови

а) адреналин

б) викасол

в) питуитрин

г) хлористый кальций

д) фибринолизин

10. Величина кровопотери определяется по

а) по анализу крови

б) пульсу

в) артериальному давлению

г) самочувствию больного

д) цвету кожных покровов

Дополните фразу:

11. скопление крови в полости сустава- это _____гемартроз__________________________

12. гемоторакс- это скопление крови в _______плевральнои полости_______________________________

13. больной с легочным кровотечением транспортируется в положении полусидячем полоджении__________

14. артериальный жгут накладывается по отношению к ране _проксималmyj___________________

15. наличие крови в моче- это __________________гематурия____________________________

Установите соответствие

Каждый ответ может использоваться несколько раз или ни разу.

16. АРТЕРИЯ ТОЧКА ПРИЖАТИЯ

1. СОННАЯ А- Бедренная кость в области паховой складки

2. ПОДКЛЮЧИЧНАЯ Б - Головка плечевой кости

3. ПОДМЫШЕЧНАЯ В - Поперечный отросток 6-го шейного позвонка

4. ПЛЕЧЕВАЯ Г- Первое ребро

5. БЕДРЕННАЯ Д - Плечевая кость

17. КОЛИЧЕСТВО КРОВИ СТЕПЕНЬ КРОВОПОТЕРИ

1. 500 – 700 мл А- Нормальная величина крови в организме

2. 5500 мл Б- Легкая кровопотеря

3. 1500 – 2000 мл В- Средняя кровопотеря

4. 1000 – 1400 мл Г- Тяжелая кровопотеря

Д- Острая кровопотеря

18. Установите последовательность наложения артериального жгута

а) положить ткань выше раны 3

б) растянуть жгут и положить 2 тура 4

в) придать конечности возвышенное положение 2

г) закрепить концы жгута 6

д) провести пальцевое прижатие артерии 1

е) наложить остальные туры 8

ж) проверить правильность наложения жгута 5

з) положить записку с временем наложения жгута. 7

Ответы к тестам

1-в, 2- б, 3а, 4г, 5г, 6а,в, 7 а,б,г, 8, бг, 9бг, 10 абв, 11 гемартроз, 12 плевральной полости, 13 полусидячем; 14 проксимальнее; 15 гематурия; 16 1-в,2-г, 3-б,4-д, 5-а; 17 1-б,2-а, 3-г,4-в;18. д-в-а-б-ж-г-з

Основы трансфузиологии

ВЫБЕРИТЕ ОДИН ПРАВИЛЬНЫЙ ОТВЕТ:

1. Реинфузия - это переливание

а) крови, излившейся в полые органы

б) крови, излившейся в полости

в) после эксфузии

г) консервированной крови

2. Определять гр.крови и Rh-фактор при повторных гемотрансфузиях

а) нужно только перед первой трансфузией

б) не нужно; взять из истории болезни

в) не нужно; взять из паспорта больного

г) нужно перед каждой трансфузией

3. Пробу на индивидуальную (групповую) совместимость при повторных трансфузиях проводить

а) нужно перед каждым переливанием

б) нужно только перед первым переливанием

в) не нужно, выясняется из анамнеза

г) не нужно, есть в истории болезни

4. Гемодинамические кровезаменители - это

а) альбумин и протеин

б) полиглюкин и реополиглюкин

в) гемодез и полидез

г) хлосоль и дисоль

5. При определении группы крови физиологический раствор добавляют с целью

а) ускорить реакцию агглютинации

б) отличить IV группу от других

в) отличить истинную агглютинацию от ложной

г) определить пригодность крови к переливанию

6. Переливание крови противопоказано при

а) тяжелой интоксикации

в) потере более 25% ОЦК

г) тяжелом нарушении деятельности почек

7. При переливании плазмы необходимо провести пробу на

а) биологическую совместимость

б) резус - совместимость

в) индивидуальную совместимость

г) пробы не нужны

8. Компоненты и препараты крови - это

а) полиглюкин, гемодез, полидез

б) глюгицир, глюкоза, гаммаглобулин

в) альбумин, тромбоцитарная масса, плазма

г) аминокровин, физиологический раствор

ВЫБЕРИТЕ НЕСКОЛЬКО ПРАВИЛЬНЫХ ОТВЕТОВ.

9. При определении II-й группы крови, агглютинация произойдет с сыворотками

а) O (I) и A (II)

б) A (II) и AB (IV)

10. При подготовке больного к гемотрансфузии необходимо

а) сделать общий анализ мочи

б) дать обильное питье

в) сделать анализ кала на скрытую кровь

г) сделать клинический анализ крови

д) собрать трансфузионный анамнез

11. Ранние симптомы переливания несовместимой крови это

а) сужение зрачков

б) боли в животе и пояснице

в) анурия

г) чувство жара

д) чувство стеснения в груди

12. Агглютиноген «А» присутствует в эритроцитах крови

а) I группы

б) II группы

в) III группы

г) IV группы

д) I и II группы

13. Агглютинин альфа присутствует в плазме крови

а) I группы

б) II группы

в) III группы

г) IV группы

д) II и IV группы

14. Признаки пригодности крови к переливанию

а) однородно красная кровь

б) наличие осадка эритроцитов

в) наличие слоя лейкоцитов и тромбоцитов

г) желтая прозрачная плазма

д) розовая плазма

15. Признаки непригодности крови к переливанию

а) однородно красная кровь

б) наличие осадка эритроцитов

в) наличие хлопьев в плазме

г) отсутствие цветной полосы на этикетке

д) наличие слоя лейкоцитов и тромбоцитов

ДОПОЛНИТЕ.

16. РЕЦИПИЕНТУ С А(II) ГРУППОЙ Rh(-) МОЖНО ПЕРЕЛИТЬ КРОВЬ_А II rh-_____________________.

17. ЕСЛИ ПРИ ОПРЕДЕЛЕНИИ ГРУППЫ КРОВИ АГГЛЮТИНАЦИЯ ПРОИЗОШЛА С СЫВОРОТКОЙ I и III ГРУППЫ, А СО II НЕ ПРОИЗОШЛА, ТО ЭТА КРОВЬ A II ___________ ГРУППЫ.

18.ПРИ ОПРЕДЕЛЕНИИ ГРУППЫ КРОВИ НА ПЛАНШЕТКЕ ДОЛЖНО БЫТЬ СООТНОШЕНИЕ СЫВОРОТКИ И ИССЛЕДУЕМОЙ КРОВИ__10:1______________________________.

19. ПРИ ОПРЕДЕЛЕННОЙ БИОЛОГИЧЕСКОЙ СОВМЕСТИМОСТИ КРОВИ ЕЕ ПЕРЕЛИ-ВА-ЮТ_струйно______________.

20. ПРИ ОПРЕДЕЛЕНИИ БИОЛОГИЧЕСКОЙ СОВМЕСТИМОСТИ КРОВЕЗАМЕНИТЕЛЯ, ЕГО ПЕРЕЛИВАЮТ__капельно_________________.

УСТАНОВИТЕ СООТВЕТСТВИЕ.(Каждый ответ может быть использован один раз, несколько раз или ни одного).

21. ГРУППЫ КРОВИ: СОСТАВ КРОВИ:

1. - I группа а). А

2. - II группа б) В

3. - III группа в).a

4. - IV группа г).b

22. ВОЗДЕЙСТВИЕ: ПРЕПАРАТ КРОВИ:

1. - комплексное а) Иммуноглобулин

2. - гемостатическое б) Протеин

3. - иммунологическое в) Фибриноген

г) Альбумин

д) Тромбин

УСТАНОВИТЕ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ДЕЙСТВИЙ

Переливание крови

3 а) подобрать необходимую кровь

6 б) заполнить систему

5 в) провести пробы на индивиду-

альную и резус- совместимости

7 г) провести пробу на биологичес-

кую совместимость

1 д) определить показания и проти-

вопоказания к переливанию

4 е) определить пригодность крови

к переливанию

2 ж)определить группу крови и

резус- фактор у реципиента

1б, 2г, 3а,4б,5в,6г,7а,8в,9вг, 10агд, 11бгд, 12 бг, 13 ав, 14 бвг, 15 а,вг, 16 A (II) Rh (-),17 A (II), 18 10:1, 19 струйно, 20 капельно, 21 1-вг, 2аг, 3бв, 4аб, 22 1-бг, 2вд,3 а, 23 – д-ж-а-е-в-б-г

Десмургия

Выберите один правильный ответ:

1. Функциональное назначение защитной повязки.

а) остановка кровотечения

б) постоянный доступ лекарственного вещества

в) профилактика вторичного инфицирования

г) герметизация раны

2. Функциональное назначение окклюзионной повязки

а) герметизация раны

б) защита раны от инфицирования

в) устранение деформации

г) воздействие лекарственных веществ.

3. Основное назначение компрессной повязки

а) согреть пациента

б) удлинить срок действия препарата

в) защитить рану от инфицирования

г) остановить кровотечение

4. Размеры широкого бинта

а) 3 - 7 см х 5 м

б) 10-12 см х 7 м

г) 14-16 см х 5 м

д) 14 -16 см х 7 м

5. Повязка на пальцы кисти

а) варежка

б) спиральная

в) рыцарская перчатка

г) циркулярная

ВЫБЕРИТЕ НЕСКОЛЬКО ПРАВИЛЬНЫХ ОТВЕТОВ:

6. Специальная повязка – это

а) гипсовая

б) цинк-желатиновая

г) окклюзионная

7. Для компрессной повязки медицинская сестра приготовит

а) этиловый спирт 96 о

б) этиловый спирт 45 о

в) вощаную бумагу

г) целлофан

д) серую вату

8. Для окклюзионной повязки медицинская сестра приготовит

а) фурацилин

б) 5% раствор йода

в) целлофан

д) вазелин

9. Для наложения клеевых повязок используют

б) лейкопластырь

в) коллодий

г) клей БФ-6

10. Места для наложения пращевидной повязки

б) переносица

в) верхняя губа

г) затылок

д) височная область.

10. Повязки по способу закрепленя перевязочного материала

а) гипсовая

б) клеевая

в) цинк-желатиновая

г) косыночная

11. Для доступа препарата к ране накладываются повязки

а) окклюзионная

б) защитная

в) лекарственная

г) давящая

д) компрессная

12. Показания для наложения окклюзионной повязки

а) артериальное кровотечение

б) венозное кровотечение

в) закрытый пневмоторакс

г) открытый пневмоторакс

д) клапанный пневмоторакс

ДОПОЛНИТЕ:

13. Способ закрепления перевязочного материала на поверхности тела …………..

14. Снятие старой повязки и замена ее на новую ………………..

15. Обездвиживание конечностей осуществляется с помощью ………. повязки.

16. Длительное воздействие на ткани лекарственного вещества осуществляется с помощью ………….. повязки.

17. Размеры стандартной медицинской косынки промышленного производства ……………...

УСТАНОВИТЕ СООТВЕТСТВИЕ:(Каждый ответ может быть использован один раз, несколько раз или ни разу)

ОТВЕТЫ

1– В;2. А,3– Б,4– Г,5– В,6–БВГ, 7– БВГД, 8– АГД. 9– а,б,в, 10– АВГ, 11– б,г, 12- в,д, 13г,д, 14 повязка, 15 перевязка, 16 иммобилизирующей, 17 компрессной, 18 100х100х136 см,19 1-бве, 2-ад, 20 1-г, 2-б. 21 1-бд, 2авг

А) операция

б) дренирование

г) перекись водорода

3. Гнойное воспаление потовых желез – это

а) гидраденит

б) карбункул

в) флегмона

г) абсцесс

4. Воспаление клетчатки – это

а) рожистое воспаление

б) абсцесс

в) гидраденит

г) флегмона

5. Яркая краснота с четкой границей характерна для

а) сепсиса

б) остеомиелита

В) рожистого воспаления

г) лимфаденита

Выберите несколько правильных ответов:

6. Волосяной фолликул воспаляется при:

а) флегмоне

б) фурункуле

в) карбункуле

г) гидрадените

д) лимфадените.

6.Формы рожистого воспаления

а) острая

б) подострая

в) флегмонозная

г) эритематозная

д) молниеносная

7. Стадии развития лактационного мастита

а) инфильтрационная

б) абсцедирующая

в) флегмонозная

г) гангренозная

д) мигрирующая

8. К анаэробной хирургической инфекции относится

а) костный туберкулез

б) газовая гангрена

в) септикопиемия

г) столбняк

д) остеомиелит

9. К специфической инфекции относится

а) костный туберкулез

б) столбняк

в) сепсис

г) панариций

д) газовая гангрена

10. Средства неспецифической профилактики газовой гангрены:

а) противогангренозная сыворотка

б) антибиотики

а) лампасные разрезы

г) уход за кожей

д) радикальная ПХО

11. Экстренная профилактика столбняка проводится при:

а) любых ожогах

б) электротравмах

в) операциях на ЖКТ

г) случайных ранах

д) любой хирургической инфекции

12. Виды сепсиса

а) острый

б) хронический

в) геморрагический

г) некротический

д) молниеносный

Дополните:

13. ……………. – это способность возбудителя вырабатывать токсические вещества

14. Воспаление нескольких волосяных фолликулов и сальных желез называется ___________

15. Реакция организма на инфекцию может быть ………….. и …………….

16. Судороги и высокая температура – признаки ……………

17. Хирургическая инфекция, которая вызывается только одним возбудителем называется ……………

Установите соответствие:

Каждый ответ может использоваться 1-2 раза или ни разу.

ОТВЕТЫ

1-г, 2.в, 3.а, 4.в, 5.б. 6.г, 7.абв, 8.бв, 9.вг, 10. бвг, 11. бгд, 12. гд, 13. авг, 14. бд, 15. ад, 16. бгд, 17. поллакурия, 18. анурия, 19. 1-бге, 2абд, 20. 1-абвд, 2бвд, 21 1-агдж, 2 вг, 22. в-б-а-д-г

ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ ДЛЯ ОБУЧЕНИЯ И КОНТРОЛЯ

УСВОЕНИЯ УЧЕБНОЙ ДИСЦИПЛИНЫ

Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции

Выберите правильный ответ.

1. Асептика – это:

а) уничтожение болезнетворных микробов

б) уничтожение всего живого

в) комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране

г) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

2. Антисептика – это:

а) уничтожение болезнетворных микробов

б) уничтожение всего живого

в) комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране, организме

г) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану, в организм

3. Индикатор стерильности при автоклавировании (1,1 атм.):

а) аскорбиновая кислота

б) бензойная кислота

в) янтарная кислота

г) винно-каменная кислота

4. Индикатор стерильности перевязочного материала:

а) мочевина

б) тиомочевина

в) бензойная кислота

г) винно-каменная кислота

5. Ведущий метод стерилизации хирургических инструментов по ОСТу:

а) обжигание

б) пар под давлением

в) текучий пар

г) сухой жар

6. Самый надежный метод контроля качества стерильности:

а) физический

б) химический

в) биологический

г) бактериологический

7. Современный метод стерилизации кетгута по ОСТу:

а) автоклавирование

б) ионизирующее излучение

в) первомур

г) кипячение

8. ПХО ран лежит в основе антисептики:

а) химической

б) биологической

в) механической

г) физической

9. Дренирование ран лежит в основе антисептики:

а) химический

б) физической

в) механической

г) биологической

10. Использование протеолитических ферментов лежит в основе антисептики:

а) механической

б) физической

в) химический

г) биологической

Выберите несколько правильных ответов.

11. Источник экзогенной инфекции:

а) бациллоноситель золотистого стафилококка

б) медицинский персонал с ОРВ

в) пациент с ОРВИ

г) нестерильные инструменты

12. Источники эндогенной инфекции:

а) хронический гепатит у пациента

б) медицинская сестра – носитель австралийского антигена

в) гнойничковые заболевания кожи пациента

г) гнойничковые заболевания кожи хирурга

д) вживленный кардиостимулятор

13. Современные методы стерилизации шелка:

а) текучий пар

б) пар под давлением

в) хлоргексидин

г)первомур

д) раствор Люголя

14. Современные методы стерилизации инструментов с оптикой:

а) сайдекс

б) кипячение

в) автоклавирование

г) сухой жар

д) 6 % раствор перекиси водорода

15. Современные препараты для хирургической антисептики рук по ОСТу:

а) хлорамин Б – 0,25 %

б) первомур – 2,4 %

в) гибитан – 0,5 %

г) АХД –2000;

д) нашатырный спирт 0,5 %

16. Физические методы асептики:

а) УФО помещений

б) УФО крови

в) пар под давлением

г) ионизирующее излучение

д) сухой жар

Физические методы антисептики:

а) ультразвук

б) некрэктомия

в) дренирование

г) изотонический раствор натрия хлорида

д) гигроскопичность марли.

17. Профилактика имплантационной инфекции включает:

а) УФО помещений

б) стерилизацию шовного материала

в) стерилизацию эндопротезов

г) стерилизацию операционного белья

д) хирургическую антисептику рук

18. Условия для выполнения азопирамовой пробы:

а) хорошее освещение

б) холодные инструменты

в) свежий реактив

г) экспозиция 1 мин

д) экспозиция 2 мин

19. Концентрации растворов перекиси водорода, используемых в хирургии:

Дополните.

20. Начальная температура моющего раствора на основе «Биолота»40-45 ° С, экспозиция15 мин.

21. Начальная температура моющего раствора на основе СМС50-55° С, экспозиция15 мин.

22. Для приготовления 1 л моющего раствора берется 15 мл 33 % раствора пергидроля, СМС 5 г и воды980 мл.

23. Универсальный контроль качества предстерилизационной очистки …азопирамовая проба

24. Химическая стерилизация 6 % раствором перекиси водорода при температуре 50 °С проводится в течение180мин, при температуре 18-20 °С360 мин.

Установите соответствие (каждый ответ может использоваться один, несколько раз или ни одного).

Установите последовательность действий.

31. Подготовка бикса для сдачи в ЦСО:

а) промаркировать КСК5

б) проверить герметичность КСК2

в) протереть спиртом; выстлать дно и стенки простыней4

г) закрепить пояс в положение с открытыми отверстиями;1

д) уложить материал и разместить индикаторы стерильности3

32. Дезинфекция инструментов:

а) промыть под проточной водой

б) отмыть от крови в накопителе

в) обеззаразить накопитель

г) замочить в накопителе

д) замочить в дезинфицирующем растворе

33. Предстерилизационная очистка инструментов:

а) высушить инструменты

б) ополоснуть дистиллированной водой

в) промыть в моющем растворе;

г) выборочно провести азопирамовую пробу

д) отмыть под проточной водой

е) погрузить в моющий раствор

Ответы к тестам

1. г; 2. в; 3. б;.4 .а; 5.г; 6. г; 7. б; 8. в; 9. б; 10. г; 11 а,б,в 12 а,в, 13 б,г, 14. а, д, 15 б, в, г, 16. а, в, г, д, 17 а в д; 18. б, в, 19. б, в, г, 20. б, в, г, д, 21 40-45, 15 мин; 22. 50-55 С, 15 мин, 23 15 мл, 5 г, 980 мл, 24. азопирамовая проба; 25. 180 мин, 360 мин, 26. 1-д,2-г,е;3-в; 4-б; 27. 1-в;2-е;3-д;4-а; 28. 1-в,г;2-а;3-е; 4-д; 29. 1-а; 2-г,3-б, 4-в, д; 30. 1-в,г; 2-а; 3-д; 4-е; 31. б – г – в – д – а; 32. г – б – д – в - а; 33. е – в – д – б – а - г;

Обезболивание

Выберите один правильный ответ:

1. Антидотом при передозировке новокаина является

а) адреналин

б) эфедрин

в) амилнитрит

г) кофеин

2. Хирургическая операция выполняется на стадии и уровне наркоза

а) на II стадии наркоза

б) на 2-м уровне III стадии наркоза

в) на 3 уровне III стадии наркоза

г) на 4-м стадии III стадии наркоза

3. Во время наркоза медицинская сестра заполняет

а) историю болезни

б) лист наблюдения

в) анестезиологическую карту

г) температурный лист

Выберите несколько правильных ответов:

4. Болевые ощущения формируются в

а) нервных окончаниях

б) ретикулярной формации

в) темянной доли головного мозга

г) чувствительных корешках спинного мозга

д) проводящих путях нервной системы

5. В раздражении болевых рецепторов участвуют:

а) кинины

б) адреналин

в) серотомин

г) гистамин

д) норадреналин

6.Виды местной анестезии

а) срочная

б) плановая

в) поверхностная

г) инфильтрационная

д) внутривенная

1в, 2б, 3в, 4бв, 5авд, 6вгд

Гемостаз

Выберите один правильный ответ.

1. Причина острой кровопотери

– различные инфекционные заболевания, заражение которыми произошло в условиях лечебного учреждения. В зависимости от степени распространения различают генерализованные (бактериемию, септицемию, септикопиемию, бактериальный шок) и локализованные формы внутрибольничных инфекций (с поражением кожи и подкожной клетчатки, дыхательной, сердечно-сосудистой, урогенитальной системы, костей и суставов, ЦНС и т. д.). Выявление возбудителей внутрибольничных инфекций проводится с помощью методов лабораторной диагностики (микроскопических, микробиологических, серологических, молекулярно-биологических). При лечении внутрибольничных инфекций используются антибиотики, антисептики, иммуностимуляторы, физиотерапия, экстракорпоральная гемокоррекция и т. д.

Внутрибольничные (госпитальные, нозокомиальные) инфекции - инфекционные заболевания различной этиологии, возникшие у пациента или медицинского сотрудника в связи с пребыванием в лечебно-профилактическом учреждении. Инфекция считается внутрибольничной, если она развилась не ранее 48 часов после поступления больного в стационар. Распространенность внутрибольничных инфекций (ВБИ) в медицинских учреждениях различного профиля составляет 5-12%. Наибольший удельный вес внутрибольничных инфекций приходится на акушерские и хирургические стационары (отделения реанимации, абдоминальной хирургии, травматологии , ожоговой травмы, урологии , гинекологии , отоларингологии , стоматологии, онкологии и др.). Внутрибольничные инфекции представляют собой большую медико-социальную проблему, поскольку утяжеляют течение основного заболевания, увеличивают длительность лечения в 1,5 раза, а количество летальных исходов - в 5 раз.

Этиология и эпидемиология внутрибольничных инфекций

Основными возбудителями внутрибольничных инфекций (85% от общего числа) выступают условно-патогенные микроорганизмы: грамположительные кокки (эпидермальный и золотистый стафилококк, бета-гемолитический стрептококк , пневмококк, энтерококк) и грамотрицательные палочковидные бактерии (клебсиеллы, эшерихии, энтеробактер, протей, псевдомонады и др.). Кроме этого, в этиологии внутрибольничных инфекций велика удельная роль вирусных возбудителей простого герпеса , аденовирусной инфекции , гриппа , парагриппа, цитомегалии , вирусных гепатитов , респираторно-синцитиальной инфекции , а также риновирусов , ротавирусов, энтеровирусов и пр. Также внутрибольничные инфекции могут быть вызваны условно-патогенными и патогенными грибами (дрожжеподобными, плесневыми, лучистыми). Особенностью внутригоспитальных штаммов условно-патогенных микроорганизмов служит их высокая изменчивость, лекарственная резистентность и устойчивость к воздействию факторов среды (ультрафиолета, дезинфектантов и пр.).

Источниками внутрибольничных инфекций в большинстве случаев выступают пациенты или медицинский персонал, являющиеся бактерионосителями или больными стертыми и манифестными формами патологии. Как показывают исследования, роль третьих лиц (в частности, посетителей стационаров) в распространении ВБИ невелика. Передача различных форм госпитальной инфекции реализуется с помощью воздушно-капельного, фекально-орального, контактного, трансмиссивного механизма. Кроме этого, возможен парентеральный путь передачи внутрибольничной инфекции при проведении различных инвазивных медицинских манипуляций: забора крови, инъекций, вакцинации , инструментальных манипуляций, операций, ИВЛ , гемодиализа и пр. Таким образом в медучреждении возможно заразиться гепатитами , и , гнойно-воспалительными заболеваниями, сифилисом , ВИЧ-инфекцией . Известны случаи внутрибольничных вспышек легионеллеза при приеме больными лечебного душа и вихревых ванн.

Факторами, участвующими в распространении внутрибольничной инфекции, могут выступать контаминированные предметы ухода и обстановки, медицинский инструментарий и аппаратура, растворы для инфузионной терапии, спецодежда и руки медперсонала, изделия медицинского назначения многоразового использования (зонды, катетеры, эндоскопы), питьевая вода, постельные принадлежности, шовный и перевязочный материал и мн. др.

Значимость тех или иных видов внутрибольничной инфекции во многом зависит от профиля лечебного учреждения. Так, в ожоговых отделениях преобладает синегнойная инфекция , которая в основном передается через предметы ухода и руки персонала, а главным источником внутрибольничной инфекции являются сами пациенты. В учреждениях родовспоможения основную проблему представляет стафилококковая инфекция, распространяемая медицинским персоналом-носителем золотистого стафилококка. В урологических отделениях доминирует инфекция, вызываемая грамотрицательной флорой: кишечной, синегнойной палочкой и др. В педиатрических стационарах особую значимость имеет проблема распространения детских инфекций – ветряной оспы , эпидемического паротита , краснухи , кори . Возникновению и распространению внутрибольничной инфекции способствуют нарушение санитарно-эпидемиологического режима ЛПУ (несоблюдение личной гигиены, асептики и антисептики, режима дезинфекции и стерилизации, несвоевременное выявление и изоляция лиц-источников инфекции и т. д.).

К группе риска, в наибольшей степени подверженной развитию внутрибольничной инфекции, относятся новорожденные (особенно недоношенные) и дети раннего возраста; пожилые и ослабленные пациенты; лица, страдающие хроническими заболеваниями (сахарным диабетом , болезнями крови, почечной недостаточностью), иммунодефицитом, онкопатологией. Восприимчивость человека к внутрибольничным инфекциям увеличивается при наличии у него открытых ран, полостных дренажей, внутрисосудистых и мочевых катетеров, трахеостомы и других инвазивных устройств. На частоту возникновения и тяжесть течения внутрибольничной инфекции влияет долгое нахождение пациента в стационаре, длительная антибиотикотерапия, иммуносупрессивная терапия.

Классификация внутрибольничных инфекций

По длительности течения внутрибольничные инфекции делятся на острые, подострые и хронические; по тяжести клинических проявлений – на легкие, среднетяжелые и тяжелые формы. В зависимости от степени распространенности инфекционного процесса различают генерализованные и локализованные формы внутрибольничной инфекции. Генерализованные инфекции представлены бактериемией, септицемией, бактериальным шоком. В свою очередь, среди локализованных форм выделяют:

• инфекции кожи, слизистых и подкожной клетчатки, в т. ч. послеоперационных, ожоговых, травматических ран. В частности, к их числу относятся омфалит , абсцессы и флегмоны , пиодермия , рожа , мастит , парапроктит , грибковые инфекции кожи и др.
• инфекции полости рта (стоматит) и ЛОР-органов (ангина , фарингит , ларингит , эпиглоттит , ринит , синусит , отит , мастоидит)
• инфекции бронхолегочной системы (бронхит , пневмония , плеврит , абсцесс легкого , гангрена легкого , эмпиема плевры , медиастинит)
• инфекции пищеварительной системы (гастрит , энтерит , колит , вирусные гепатиты)
• глазные инфекции (блефарит , конъюнктивит , кератит)
• инфекции урогенитального тракта (бактериурия, уретрит , цистит , пиелонефрит , эндометрит, аднексит)
• инфекции костно-суставной системы (бурсит , артрит , остеомиелит)
• инфекции сердца и сосудов (перикардит , миокардит , эндокардит , тромбофлебиты).
• инфекции ЦНС (абсцесс мозга , менингит , миелит и др.).

В структуре внутрибольничных инфекций на долю гнойно-септических заболеваний приходится 75-80%, кишечных инфекций - 8-12%, гемоконтактных инфекций - 6-7%. На прочие инфекционные заболевания (ротавирусные инфекции, дифтерию , туберкулез , микозы и др.) приходится около 5-6%.

Диагностика внутрибольничных инфекций

Критериями, позволяющими думать о развитии внутрибольничной инфекции, служат: возникновение клинических признаков заболевания не ранее чем через 48 часов после поступления в стационар; связь с проведением инвазивного вмешательства; установление источника инфекции и фактора передачи. Окончательное суждение о характере инфекционного процесса получают после идентификации штамма возбудителя с помощью лабораторных методов диагностики.

Для исключения или подтверждения бактериемии проводится бактериологический посев крови на стерильность, желательно не менее 2-3-х раз. При локализованных формах внутрибольничной инфекции микробиологическое выделение возбудителя может быть произведено из других биологических сред, в связи с чем выполняется посев мочи, кала, мокроты, отделяемого ран, материала из зева, мазка с конъюнктивы, из половых путей на микрофлору. Дополнительно к культуральному методу выявления возбудителей внутрибольничных инфекций используются микроскопия, серологические реакции (РСК, РА, ИФА, РИА), вирусологический, молекулярно-биологический (ПЦР) методы.

Лечение внутрибольничных инфекций

Сложности лечения внутрибольничной инфекции обусловлены ее развитием в ослабленном организме, на фоне основной патологии, а также резистентностью госпитальных штаммов к традиционной фармакотерапии. Больные с диагностированными инфекционными процессами подлежат изоляции; в отделении проводится тщательная текущая и заключительная дезинфекция. Выбор противомикробного препарата основывается на особенностях антибиотикограммы: при внутрибольничной инфекции, вызванной грамположительной флорой наиболее эффективен ванкомицин; грамотрицательными микроорганизмами – карбапенемы, цефалоспорины IV поколения, аминогликозиды. Возможно дополнительное применение специфических бактериофагов, иммуностимуляторов, интерферона, лейкоцитарной массы, витаминотерапии.

При необходимости проводится чрескожное облучение крови (ВЛОК, УФОК), экстракорпоральная гемокоррекция (гемосорбция , лимфосорбция). Симптоматическая терапия осуществляется с учетом клинической формы внутрибольничной инфекции с участием специалистов соответствующего профиля: хирургов , травматологов , пульмонологов, урологов, гинекологов и др.

Профилактика внутрибольничных инфекций

Основные меры профилактики внутрибольничных инфекций сводятся к соблюдению санитарно-гигиенических и противоэпидемических требований. В первую очередь, это касается режима дезинфекции помещений и предметов ухода, применения современных высокоэффективных антисептиков, проведения качественной предстерилизационной обработки и стерилизации инструментария, безукоснительного следования правилам асептики и антисептики.

Медицинский персонал должен соблюдать меры индивидуальной защиты при проведении инвазивных процедур: работать в резиновых перчатках, защитных очках и маске; осторожно обращаться с медицинским инструментарием. Большое значение в профилактике внутрибольничных инфекций имеет вакцинация медработников от гепатита В, краснухи, гриппа, дифтерии, столбняка и других инфекций. Все сотрудники ЛПУ подлежат регулярному плановому диспансерному обследованию, направленному на выявление носительства патогенов. Предупредить возникновение и распространение внутрибольничных инфекций позволит сокращение сроков госпитализации пациентов, рациональная антибиотикотерапия, обоснованность проведения инвазивных диагностических и лечебных процедур, эпидемиологический контроль в ЛПУ.